– Secreção uretral, secreção vaginal, secreção do colo uterino, 1º jatourinário, esperma.

– Urina: 20 mL.

– Preencher questionário para secreções.

– Coleta uretral: Vir para a coleta, preferencialmente pela manhã sem urinar, ou estar sem urinar há pelo menos 4 horas.
– Coleta vulvar: Vir para a coleta, preferencialmente pela manhã sem urinar, ou estar sem urinar há pelo menos 4 horas;
.Não usar desinfetantes ou medicações tópicas (caso esteja em uso, aguardar 48 horas após o término);
.Não realizar higiene/banho no dia da coleta;
.Não ter relação sexual nas últimas 24 horas anteriores ao exame.
– Coleta em vagina, fundo de saco vaginal, colo uterino e canal endocervical: A paciente não deverá ter feito ducha vaginal nas 24 horas anteriores ao exame;
.Não fazer uso de desinfetantes ou medicações tópicas (caso estiver, aguardar 48 horas após o término);
.Não manter relação sexual nas últimas 24 horas anteriores ao exame;
.Não deve ter feito exame ginecológico com o uso de iodo ou ácido acético nas últimas 24 horas;

.Não estar menstruada (caso estiver, aguardar 48 horas após o término da menstruação).

– Esperma:
. Realização da Coleta:
. Nas dependências do laboratório ou em casa.
. Não realizamos coleta aos domingos e feriados.
. Não necessita de abstenção / abstinência de ejaculação.
. A forma de coleta do material é por masturbação, sem que haja perda do material, diretamente no frasco estéril, não utilizar preservativos ou coito interrompido, lavar mãos e genitália antes da coleta. Não utilizar qualquer tipo de lubrificante, nem mesmo saliva ou preservativos.

CRITÉRIOS DE REJEIÇÃO

– Amostras enviadas em prazo superior a 4 horas.

COMENTÁRIOS

O Trichomonas vaginalis é um flagelado patogênico, de transmissão sexual que acomete homens e mulheres. Os homens são em sua maioria assintomáticos, e nas mulheres o parasita desenvolve vaginite persistente com secreção purulenta. A sensibilidade da pesquisa varia entre 40% e 80%, sendo menor quando o intervalo entre a coleta e a pesquisa é prolongado.

– Soro.

– 0,3 mL.

– Jejum obrigatório de 8 horas.
– Intervalo entre mamadas para lactantes.

CRITÉRIOS DE REJEIÇÃO

– Hemólise acentuada. – Lipemia acentuada. – Contaminação microbiana.

COMENTÁRIOS

Teste de soroaglutinação útil no diagnostico da Febre Tifóide e Febre Paratifóide. A Febre Tifóide é uma doença causada pela Salmonella typhi, e a Febre Paratifóide pelas Salmonella paratyphi A, B e C. Manifesta-se com febre, cefaléia, alterações gastrintestinais, esplenomegalia, erupções cutâneas, astenia e prostação. O desenvolvimento de anticorpos ocorre em 25% a 100% dos casos, dependendo da gravidade da doença e da época da coleta da amostra. Aglutininas anti-O são as primeiras a surgir, por volta do décimo dia de doença, e desaparecem em 30 dias. As aglutininas anti-H surgem no fim da segunda semana com títulos ascendentes até 30 dias, quando começam a declinar. A queda é lenta e podem persistir por anos. Diante de um quadro clínico sugestivo, a positividade das aglutininas anti-O e o dado de maior valor diagnóstico. A sorologia possui maior valor diagnóstico quando são coletadas duas amostras (fase aguda e convalescênça), onde aumento nos títulos em quatro vezes é sugestivo da infecção. Em áreas endêmicas o valor diagnóstico de uma amostra é menor, sendo considerado a presença de títulos iguais ou maiores que 1/160 como indicativos de infecção aguda. No caso da ocorrência de títulos baixos, sugere-se a repetição da reação após uma semana. Falso-negativos podem ocorrer na presença de perfuração intestinal,uso de antibióticos ou corticóides.

– Fezes recente a fresco.

– Aproximadamente metade do frasco de fezes (frasco próprio).

INSTRUÇÕES

– Antes de coletar as fezes, se necessário, urinar no vaso sanitário para evitar a contaminação do material. Em casos de crianças utilizar coletor de urina, se necessário. – Evitar o uso de talco, laxantes, antiácidos, contraste oral ( utilizado em exames radiológicos) e supositórios nos 3 dias que antecedem ao exame e no dia da coleta. – Defecar em vasilhame limpo e seco. CRITÉRIOS DE REJEIÇÃO – Fezes colhidas em conservantes. – Amostra contaminada por urina. COMENTÁRIOS Os açucares não absorvidos na porção alta do intestino delgado são detectados como corpos redutores nas fezes. Trata-se de um teste de triagem cuja positividade denota a deficiência de dissacaridases (sacarose, lactose, maltose), diferenciando diarréia secretora de osmótica (secundária a intolerância aos carboidratos). Fermentação bacteriana pode levar a falso-positivos.

– Fezes no MIF de 3 a 5 dias ou conforme orientação médica.

– Aproximadamente metade do frasco de fezes (frasco próprio).

– Antes de coletar as fezes, se necessário, urinar no vaso sanitário para evitar a contaminação do material.
– Evitar o uso de antiácidos, laxantes e de contraste oral (utilizado em exames radiológicos) no mínimo 72 horas antes da coleta das fezes ou conforme orientação médica.
– Defecar em vasilhame limpo e seco.
– Retirar frações de fezes em diferentes partes do bolo fecal (início, meio e fim), de modo que complete 1/2 (meio) frasco, contendo o conservante líquido (MIF), fornecido pelo laboratório ou adquirido em farmácia.
– Dissolver e homogeneizar (misturar bem) as fezes coletadas no líquido conservante para que as mesmas fiquem totalmente cobertas pelo MIF.
– O número de amostras de fezes a serem coletadas e a periodicidade depende da orientação médica. Se não houver orientação médica, coletar pelo menos 03 amostras de fezes recentemente emitidas em dias diferentes (consecutivos ou alternados). Informar ao laboratório o número de amostras colhidas, no momento da entrega do material.
– Colocar todas as amostras de fezes dentro do mesmo frasco contendo MIF.
– Sempre que houver muco (catarro), pus ou sangue, colher esta porção para que seja analisada, informando a presença dessas substâncias ao entregar o material.
– Caso seja visualizado algum parasita, coletá-lo informando o achado ao atendente no momento da entrega do material para o adequado processamento da amostra.
– Não é necessário colocar na geladeira, pois o líquido é conservante.
– O recipiente contendo o conservante deve ficar em pé dentro da sacola ao ser transportado. Cuidado para não pressionar o frasco, pois o material poderá vazar.
– Não pode ser ingerido e deve ser mantido longe do alcance das crianças.

COMENTÁRIOS

Usado para isolamento de ovos, cistos e trofozóitos. Amostras são colhidas e acondicionadas com MIF em 3 a 5 dias, consecutivos ou alternados, ou conforme orientação médica.

– Fezes recente a fresco.

– Aproximadamente metade do frasco de fezes (frasco próprio).

– Antes de coletar as fezes, se necessário, urinar no vaso sanitário para evitar a contaminação do material. Em casos de crianças utilizar coletor, se necessário.
– Evitar o uso de antiácido, laxantes e de contraste oral (utilizado em exames radiológicos) no mínimo 3 dias antes da coleta das fezes ou conforme orientação médica.
– Defecar em vasilhame limpo e seco.
– Retirar frações de fezes em diferentes partes do bolo fecal (inicio, meio e fim) e colocar em frasco fornecido pelo laboratório ou adquirido em farmácia, sem liquido conservante, de modo que complete pelo menos meio frasco.
– Sempre que houver muco (catarro), pus ou sangue, colher esta porção para que seja analisada, informando a presença dessas substancias ao entregar o material.
– Caso seja visualizado algum parasita, coletá-lo informando o achado ao atendente no momento da entrega do material para o adequado processamento da amostra.

COMENTÁRIOS

Utilizado para identificação das diversas infestações parasitárias (ovos e larvas de helmintos e cistos de protozoários) e na triagem das infecções intestinais. A intensidade do parasitismo influi no número de formas parasitárias eliminadas. É recomendável o exame de fezes em 03 amostras colhidas em dias diferentes, pois a ausência de parasitas em uma amostra de fezes não elimina a possibilidade da presença do mesmo no organismo.

– Soro.

– 1,5 mL.

– Jejum não obrigatório.

CRITÉRIOS DE REJEIÇÃO

– Amostra colhida em tubo impróprio para coleta de metais.

COMENTÁRIOS

A absorção se dá pelas vias respiratória e gastrointestinal. A absorção gastrointestinal esta relacionada com o teor de ferro na dieta: indivíduos anêmicos absorvem maior quantidade do metal. Sabe-se que a inalação de vapores de manganês produz deterioração progressiva do SNC. O KMn04 atua destruindo as células das mucosas por ação caustica. O manganês concentra-se no cérebro, ossos, fígado, pâncreas e rins. Elimina-se lentamente pela urina, bile e fezes.

– Sangue total em EDTA + lâminas com gota espessa + esfregaços sanguíneos.

– Sangue total em EDTA: 1,0 mL.
– Lâminas com gota espessa: 2 lâminas.
– Lâminas de esfregaços sanguíneos: várias lâminas

– A malária é a entidade mais frequente e deve ser pesquisada com insistência, nos casos negativos com suspeita clinica importante.
– A positividade aumenta na fase aguda das infecções nos picos febris.

CRITÉRIOS DE REJEIÇÃO

– Amostra coagulada.

COMENTÁRIOS

A pesquisa em sangue periférico é indicada no diagnóstico de malária. A demonstração do parasito e a diferenciação da espécie é muito importante, já que o tratamento é diferente para cada espécie: P.vivax, P.falciparum, P.malarie. A pesquisa possui boa sensibilidade e especificidade e permite a identificação da espécie e estágio de desenvolvimento do plasmódio. Entretanto apresenta desvantagens a serem consideradas: durante a coloração pode haver perda de trofozoítas; resultados falso-negativos podem ocorrer em parasitemias escassas. De forma alternativa pode-se utilizar imunoensaio para pesquisa de antígeno do Plasmodium.

– Soro.

– 0,5 mL.

– Jejum obrigatório de 8 horas.
– Intervalo máximo entre mamadas para lactantes.

CRITÉRIOS DE REJEIÇÃO

– Hemólise acentuada. – Lipemia acentuada. – Contaminação microbiana.

COMENTÁRIOS

A Antiestreptolisina O (AEO) elevada indica infecção por estreptococos beta-hemolíticos, mas de forma isolada não permite o diagnóstico de febre reumática ou glomerulonefrite difusa aguda (GNDA). Níveis de AEO podem apresentar variações, com valores normais diferentes em populações distintas. Títulos em elevação durante determinações seriadas são mais significativos que uma única determinação. Nas infecções estreptocócicas, AEO é detectado em 85% das faringites, 30% das piodermites e 50% das GNDA. Na febre reumática, 80% dos casos apresentam AEO elevada 2 meses após início do quadro, 75% em 2 meses, 35% em 6 meses e 20% em 12 meses. Falsos-positivos podem ocorrer em pacientes com tuberculose, hepatites e esquistossomose.

– Sangue total (EDTA).

– 5,0 mL.

– Jejum não obrigatório.

CRITÉRIOS DE REJEIÇÃO

– Presença de macrocoágulo. – Hemólise intensa. – Amostra degenerada.

COMENTÁRIOS

Os reticulócitos tem diâmetro pouco maior que o da hemácia e não tem núcleo, sendo formado por citoplasma acidófilo, no qual pode-se ver um reticulado basófilo após coloração com azul de cresil brilhante. Os reticulócitos estão presentes normalmente no sangue em torno de 0,5 a 1,5% do total de hemácias e correspondem a células recém-emitidas na circulação. A contagem de reticulócitos é útil para avaliar atividade eritropoietica, sendo importante para o diagnostico diferencial das anemias e para acompanhar tratamento. Valores aumentados são encontrados na hiperatividade da medula óssea (reticulocitose), como por exemplo nas anemias hemolíticas. Valores diminuídos são encontrados na hipoatividade da medula óssea (reticulocitopenia), como por exemplo na aplasia medular.

– Plasma citratado.

– 2,0 mL.

– Jejum desejável de 4 horas.

– Informar o uso de anticoagulantes: Clexane, Heparina, Hirudoid, Liquemine, Marcoumar e Marevan.

CRITÉRIOS DE REJEIÇÃO

– Hemólise acentuada. – Lipemia acentuada. – Icterícia intensa. – Presença de coágulos.

COMENTÁRIOS

Permite avaliação do tempo de coagulação do plasma após adição de extrato de cérebro com atividade tromboplastica padronizada. O RNI (relação normatizada internacional) é baseado na relação do valor do tempo de protrombina (TP) do paciente e a media dos valores normais de plasmas normais frescos, e representa a relação do TP se o teste tivesse sido realizado com a tromboplastina IRP (international reference preparation). Esta padronização evita variações interlaboratoriais. O Tempo de protrombina mede a via extrínseca da coagulação, prolongando-se nas deficiências seletivas ou conjuntas dos fatores II, V, VII e X. Como os quatro fatores são sintetizados no fígado e três dos quais são vitamina K dependentes (II, VII, X), o TP é utilizado mais comumente no monitoramento da terapia anticoagulante oral (warfarin), doenças hepáticas, deficiência de vitamina K, coagulação intravascular disseminada e deficiências dos fatores VII, V, X ou protrombina. Quando o Ptta esta prolongado juntamente com o TP ha defeito comum da coagulação (fatores X, V e II) ou estão presentes inibidores como a heparina ou a antitrombina.